Ультраструктурні зміни в нирковій тканині у щурів із нирковою недостатністю під впливом стандартизованої рослинної композиції BNO 2103

Автор(и)

DOI:

https://doi.org/10.14739/2409-2932.2022.2.251800

Ключові слова:

BNO 2103, рослинна композиція, хронічна хвороба нирок, нефропротекторний ефект, фітотерапія, доклінічне вивчення

Анотація

Менеджмент хронічної хвороби нирок – актуальне завдання глобальної системи охорони здоров’я, адже без лікування вона призводить до часткової або остаточної втрати функції нирок. Стандартизовані фітозасоби високоефективні та відносно безпечні. Науковий інтерес продовжують викликати відомі рослинні засоби для лікування захворювань сечостатевої системи в аспекті розширення показань до застосування.

Мета роботи – вивчити нефропротекторні властивості стандартизованої рослинної композиції BNO 2103, що є активним інгредієнтом рослинного засобу Канефрон Н®, на моделі ниркової недостатності в щурів.

Матеріали та методи. Дослідження здійснили на 42 самцях білих безпородних щурів масою 150–200 г, яких поділили на 4 групи. Нефропатія індукована шляхом одноразового введення 0,7 мл/кг 2,5 % розчину хромату калію. Тварини 3 і 4 груп отримували BNO 2103 у дозі 33,0 мг/кг і преднізолон у дозі 1,9 мг/кг внутрішньошлунково щодня протягом 20 днів. Після евтаназії у тварин вилучали нирки для морфологічного дослідження і вивчали за допомогою стандартних методів електронної мікроскопії.

Результати. Під впливом BNO 2103 спостерігали нормалізацію ультраструктурної картини нирок із невеликими патологічними змінами. Так, нормалізацію визначили за зменшенням ознак деструкції базальних мембран, поліпшенням будови органел, посиленням метаболічних процесів у подоцитах та ендотеліальних клітинах, зменшенням проявів у них дегенеративно-дистрофічних змін. За цими параметрами BNO 2103 перевершив референс-препарат преднізолон.

Висновки. BNO 2103 показав істотний нефропротекторний ефект, нормалізувавши ультраструктурну картину нирок у щурів в умовах ниркової недостатності. Такий ефект, імовірно, зумовлений наявністю в складі засобу біологічно активних речовин із сильною антиоксидантною, протизапальною, нефропротекторною активністю. Результати дослідження дають підстави вважати BNO 2103 перспективним нефропротекторним засобом для використання в лікуванні хронічної хвороби нирок.

Біографії авторів

В. В. Черних, Національний фармацевтичний університет, м. Харків, Україна

здобувач наукового ступеня доктора філософії з медицини, каф. клінічної фармакології та клінічної фармації

К. О. Зупанець, Національний фармацевтичний університет, м. Харків, Україна

д-р фарм. наук, професор, зав. каф. клінічної фармакології та клінічної фармації

С. К. Шебеко, Національний фармацевтичний університет, м. Харків, Україна

д-р фарм. наук, професор каф. клінічної фармакології та клінічної фармації

Посилання

GBD Chronic Kidney Disease Collaboration (2020). Global, regional, and national burden of chronic kidney disease, 1990-2017: a systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2017. Lancet, 395(10225), 709-733. https://doi:10.1016/S0140-6736(20)30045-3

Höller, M., Steindl, H., Abramov-Sommariva, D., Wagenlehner, F., Naber, K. G., & Kostev, K. (2021). Treatment of Urinary Tract Infections with Canephron® in Germany: A Retrospective Database Analysis. Antibiotics, 10(6), 685. https://doi.org/10.3390/antibiotics10060685

Shebeko, S. K., Chernykh, V. V., & Zupanets, K. O. (2020). Nephroprotective Effect of the Herbal Composition BNO 2103 in Rats with Renal Failure. Scientia Pharmaceutica, 88(4), 1-12. https://doi.org/10.3390/scipharm88040047

Faith, R. E., Allen, K. P., & Hessler, J. R. (2020). The Laboratory Rat (3rd ed., pp. 350-381). Elsevier. https://doi.org/10.1016/b978-0-12-814338-4.00010-6

Parliament, European & Council, European. (2010). Directive 2010/63/EU on the protection of animals used for scientific purposes. EU Official Journal. L276, 33-79. http://data.europa.eu/eli/dir/2010/63/2019-06-26

Appel, G. B., & D’Agati, V. D. (2019). Primary and Secondary (Non-Genetic) Causes of Focal and Segmental Glomerulosclerosis. In J. Feehally, J. Floege, M. Tonelli, R. J. Johnson (Eds.), Comprehensive Clinical Nephrology (6th ed., pp. 219-231). Elsevier.

Shebeko, S., Zupanets, I., & Zimina, M. (2020). Dose-dependent efficacy of the N-acetylglucosamine and quercetin combination in rats with renal failure. Acta Pharmaceutica Sciencia, 58(2), 154-168. http://doi:

Wedeen, R. P., & Qian, L. F. (1991). Chromium-induced kidney disease. Environmental health perspectives, 92, 71-74. https://doi.org/10.1289/ehp.92-1519395

Center for Drug Evaluation and Research. (2005, July 6). Estimating the Maximum Safe Starting Dose in Initial Clinical Trials for Therapeutics in Adult Healthy Volunteers. U.S. Food and Drug Administration. https://www.fda.gov/regulatory-information/search-fda-guidance-documents/estimating-maximum-safe-starting-dose-initial-clinical-trials-therapeutics-adult-healthy-volunteers

Flecknell, P. A. (2015). Laboratory Animal Anesthesia (4th ed.). Academic Press.

Exbrayat, J. M. (2013). General techniques in electron microscopy. In J. M. Exbrayat (Ed.), Histochemical and cytochemical methods of visualization (pp. 223-236). CRC Press.

Bozzola, J. J. (2014). Conventional specimen preparation techniques for scanning electron microscopy of biological specimens. In J. Kuo (Ed.), Electron microscopy: methods and protocols. Methods in molecular biology (Vol. 1117, pp. 133-150). Humana Press.

Hendricks, G. M. (2014). Metal shadowing for electron microscopy. In J. Kuo (Ed.), Electron microscopy: methods and protocols. Methods in molecular biology (Vol. 1117, pp. 73-93). Humana Press.

Islam, M. A., & Al-Shiha, A. (2018). Foundations of Biostatistics (1st ed., pp. 39-46; 346-368). Springer Singapore. https://doi.org/10.1007/978-981-10-8627-4

Mescher, A. L. (2018). Junqueira’s basic histology : text and atlas (15th ed.). Mcgraw-Hill Medical.

Begum, A., Sandhya, S., Shaffath Ali, S., Vinod, K. R., Reddy, S., & Banji, D. (2013). An in-depth review on the medicinal flora Rosmarinus officinalis (Lamiaceae). Acta scientiarum polonorum. Technologia alimentaria, 12(1), 61-73.

El-Desouky, M. A., Mahmoud, M. H., Riad, B. Y., & Taha, Y. M. (2019). Nephroprotective effect of green tea, rosmarinic acid and rosemary on N-diethylnitrosamine initiated and ferric nitrilotriacetate promoted acute renal toxicity in Wistar rats. Interdisciplinary toxicology, 12(2), 98-110. https://doi.org/10.2478/intox-2019-0012

Samsu, N., Soeharto, S., Rifai, M., & Rudijanto, A. (2019). Rosmarinic acid monotherapy is better than the combination of rosmarinic acid and telmisartan in preventing podocyte detachment and inhibiting the progression of diabetic nephropathy in rats. Biologics : targets & therapy, 13, 179-190. https://doi.org/10.2147/BTT.S214820

Inyushkina, Y. V., Bulgakov, V. P., Veselova, M. V., Bryukhanov, V. M., Zverev, Y. F., Lampatov, V. V., Azarova, O. V., Tchernoded, G. K., Fedoreyev, S. A., & Zhuravlev, Y. N. (2007). High rabdosiin and rosmarinic acid production in Eritrichium sericeum callus cultures and the effect of the calli on masugi-nephritis in rats. Bioscience, biotechnology, and biochemistry, 71(5), 1286-1293. https://doi.org/10.1271/bbb.60684

Ozturk, H., Ozturk, H., Terzi, E. H., Ozgen, U., Duran, A., & Uygun, I. (2014). Protective effects of rosmarinic acid against renal ischaemia/reperfusion injury in rats. JPMA. The Journal of the Pakistan Medical Association, 64(3), 260-265.

Tavafi, M., & Ahmadvand, H. (2011). Effect of rosmarinic acid on inhibition of gentamicin induced nephrotoxicity in rats. Tissue and Cell, 43(6), 392-397. https://doi.org/10.1016/j.tice.2011.09.001

Miran, M., Monsef Esfahani, H., Jung, J. H., Aliahmadi, A., Skropeta, D., Abbas-Mohammadi, M., Nejad Ebrahimi, S., & Moridi Farimani, M. (2020). Characterization and Antibacterial Activity of Phthalides from the Roots of the Medicinal Herb Levisticum officinale W.D.J. Koch. Iranian journal of pharmaceutical research : IJPR, 19(2), 182-186. https://doi.org/10.22037/ijpr.2020.112583.13839

Xu, F., Fang, X., Ye, Z., & Tao, S. (2020). Ligustilide alleviates podocyte injury via suppressing the SIRT1/NF-κB signaling pathways in rats with diabetic nephropathy. Annals of Translational Medicine, 8(18), 1154-1154. https://doi.org/10.21037/atm-20-5811

Ghaedi, N., Pouraboli, I., & Askari, N. (2020). Antidiabetic Properties of Hydroalcoholic Leaf and Stem Extract of Levisticum officinale: An implication for α-amylase Inhibitory Activity of Extract Ingredients through Molecular Docking. Iranian journal of pharmaceutical research : IJPR, 19(1), 231-250. https://doi.org/10.22037/ijpr.2020.15140.12901

Migliori, M., Cantaluppi, V., Mannari, C., Bertelli, A. A., Medica, D., Quercia, A. D., Navarro, V., Scatena, A., Giovannini, L., Biancone, L., & Panichi, V. (2015). Caffeic acid, a phenol found in white wine, modulates endothelial nitric oxide production and protects from oxidative stress-associated endothelial cell injury. PloS one, 10(4), e0117530. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0117530

Rai, U., Kosuru, R., Prakash, S., Tiwari, V., & Singh, S. (2019). Tetramethylpyrazine alleviates diabetic nephropathy through the activation of Akt signalling pathway in rats. European Journal of Pharmacology, 865, 172763. https://doi.org/10.1016/j.ejphar.2019.172763

##submission.downloads##

Опубліковано

2022-08-01

Номер

Розділ

Оригінальні дослідження